Габариты Hummer h2, 5 дв. внедорожник

Габариты Hummer h2, 5 дв. внедорожник — все размеры (ширина, высота и длина) автомобиля на WhoByCar.com Быстрый выбор автомобиля МаркаACAcuraAlfa RomeoAlpinaAlpineAM GeneralArielAroAsiaAston MartinAstroAudiAustinAutobianchiBaltijas DzipsBeijingBentleyBertoneBitterBMWBrabusBrillianceBristolBrontoBuforiBugattiBuickBYDByvinCadillacCallawayCarbodiesCaterhamChanganChangFengCheryChevroletChryslerCitroenCizetaCoggiolaDaciaDadiDaewooDAFDaihatsuDaimlerDallasDatsunDe TomasoDeLoreanDerwaysDodgeDongfengDonkervoortE-CarEagleEagle CarsEcomotorsFAWFerrariFiatFiskerFordFotonFSOFuqiGeelyGeoGMCGonowGordonGreat WallHafeiHaimaHavalHawtaiHindustanHoldenHondaHuanghaiHummerHyundaiInfinitiInnocentiInvictaIran KhodroIsderaIsuzuIVECOJACJaguarJeepJensenJMCKiaKoenigseggKTMLamborghiniLanciaLand RoverLandwindLexusLiebao MotorLifanLincolnLotusLTILuxgenMahindraMarcosMarlinMarussiaMarutiMaseratiMaybachMazdaMcLarenMegaMercedes-BenzMercuryMetrocabMGMicrocarMinelliMiniMitsubishiMitsuokaMorganMorrisNissanNobleOldsmobileOpelOscaPaganiPanozPeroduaPeugeotPiaggioPlymouthPontiacPorschePremierProtonPUCHPumaQorosQvaleReliantRenaissanceRenaultRenault SamsungRolls-RoyceRonartRoverSaabSaleenSantanaSaturnScionSEATShuanghuanSkodaSmartSoueastSpectreSpykerSsang YongSubaruSuzukiTalbotTATATatraTazzariTeslaTianmaTianyeTofasToyotaTrabantTramontanaTriumphTVRUltimaVauxhallVectorVenturiVolkswagenVolvoVortexWartburgWestfieldWiesmannXin KaiYo-mobilZastavaZotyeZXАвтокамДонинвестГАЗИЖКамазКанонирЛУАЗМосквичСеАЗСМЗТАГАЗУАЗВАЗЗАЗЗИЛМодельПоколениеМодификация

или

Быстрый поиск автомобиля

На графиках представлены габариты автомобиля Hummer h2 – ширина, длина и высота. Показаны данные для всех доступных модификаций, в том числе, для некоторых, общая ширина с зеркалами.

Самые малогабаритные автомобили отмечены зеленым цветом, а самые большие красным цветом.

Ниже приведена сводная таблица габаритных размеров по всем модификациям Hummer h2 .

• Модификация Ширина Ширина с зеркалами Длина Высота Диаметр разворота
• 5.7 AT 4WD 1992 — 2006 2197 мм - 4686 мм 1956 мм -
• 6.5d AT 4WD 1992 — 2006 2197 мм - 4686 мм 1956 мм -
• 6.6d AT 4WD 2005 — 2006 2197 мм - 4686 мм 1956 мм -

• Модификация Клиренс Колесная база Передняя колея Задняя колея
• 5. 7 AT 4WD 1992 — 2006 406 мм 3302 мм 1819 мм 1819 мм
• 6.5d AT 4WD 1992 — 2006 406 мм 3302 мм 1819 мм 1819 мм
• 6.6d AT 4WD 2005 — 2006 406 мм 3302 мм 1819 мм 1819 мм

Автоаксессуары Goodyear — Галогенная лампа Goodyear More Light h2 12V 55W P14,5s в блистере

Zoom images

• Описание
• Применение
• Технические характеристики
• Преимущества

Описание

Галогенная лампа Goodyear More Light h2 используется в фарах ближнего, дальнего освещения и противотуманных фонарях. Goodyear More Light обладает увеличенным световым потоком. Площадь освещаемого участка дороги увеличена на 50%, по сравнению со стандартной модификацией ламп.

При производстве ламп Goodyear More Light применяются особые технологии: повышение давления в колбе и изменение геометрии спирали. За счет этого длина светового луча увеличивается в 1,5 раза. Водитель сможет быстрее обнаружить препятствия на пути автомобиля и прочесть знаки дорожного движения. Благодаря лампам Goodyear More Light сохраняется больше времени для маневра.

При изготовлении ламп Goodyear More Light h2 используется кварцевое немецкое стекло с UV фильтром, который защищает фары от негативного влияния ультрафиолетового излучения.

Лампы Goodyear изготовлены на автоматизированном оборудовании, что гарантирует сверхточную установку нити накала. Благодаря этому световой поток распределяется равномерно и обеспечивает хороший обзор.

Применение

Применение

Ближний свет;
Дальний свет;
Противотуманные фонари

Технические характеристики

Технические характеристики

Категория	h2
Напряжение	12В
Мощность	55Вт
Цоколь	P14. 5s
Технология	Галогенная
Цветовая температура	3400К
Страна производитель	Китай
Тип упаковки	блистер

Преимущества

Преимущества

UV фильтр;
Полное соответствие европейским нормам ECE R37;
Увеличенная длина светового луча на 50%

Похожие товары

Галогенная лампа Goodyear Long Life H7 12V 55W PX26d

Галогенная лампа Goodyear Long Life H7 используется в фарах ближнего, дальнего света и противотуманных фонарях. Лампы Goodyear Long Life имеют увеличенный срок службы.КУПИТЬ В ИНТЕРНЕТ МАГАЗИНЕ

Галогенная лампа Goodyear h2 12V 55W P14,5s

Галогенная лампа Goodyear h2 используется в фарах ближнего, дальнего освещения и противотуманных фонарях.КУПИТЬ В ИНТЕРНЕТ МАГАЗИНЕ

Галогенная лампа Goodyear Super White H7 12V 55W PX26d

Галогенная лампа Goodyear Super White H7 используется в фарах ближнего, дальнего освещения и противотуманных фонарях. Лампа Goodyear Super White обладает ярким белым свечением с эффектом ксенона.КУПИТЬ В ИНТЕРНЕТ МАГАЗИНЕ

Сигнальная лампа Goodyear P21W 24V 21W BA15s

Сигнальная лампа накаливания Goodyear P21W 24V используется для внешних сигналов грузовых автомобилей, подсветки номерных знаков и освещения в салоне и багажном отделении грузовых авто.КУПИТЬ В ИНТЕРНЕТ МАГАЗИНЕ

Галогенная лампа Goodyear More Light H7 12V 55W PX26d

Галогенная лампа Goodyear More Light H7 используется в фарах ближнего, дальнего освещения и противотуманных фонарях. Goodyear More Light обладает увеличенным световым потоком. Площадь освещаемого участка дороги увеличена на 50%, по сравнению со стандартной модификацией ламп.КУПИТЬ В ИНТЕРНЕТ МАГАЗИНЕ

Галогенная лампа Goodyear h2 24V 70W P14,5s

Галогенная лампа Goodyear h2 24V используется в фарах ближнего, дальнего освещения и противотуманных фонарях грузовых автомобилей.КУПИТЬ В ИНТЕРНЕТ МАГАЗИНЕ

Галогенная лампа Goodyear h5 12V 60/55W P43t

Галогенная лампа Goodyear h5 используется в фарах ближнего и дальнего освещения. Соответствуют характеристикам ламп, которыми комплектуются автомобили на конвеере.КУПИТЬ В ИНТЕРНЕТ МАГАЗИНЕ

Сигнальная лампа Goodyear P21W 12V 21W BA15s

Сигнальная лампа накаливания Goodyear P21W используется для внешних сигналов автомобилей, подсветки номерных знаков и освещения в салоне и багажном отделении.КУПИТЬ В ИНТЕРНЕТ МАГАЗИНЕ

Галогенная лампа Goodyear Long Life h5 12V 60/55W P43t

Галогенная лампа Goodyear Long Life h5 используется в фарах ближнего и дальнего света. Лампы Goodyear Long Life имеют увеличенный срок службы.КУПИТЬ В ИНТЕРНЕТ МАГАЗИНЕ

Свойства клонированной и экспрессированной РНКазы h2 человека

. 1999 1 октября; 274 (40): 28270-8.

doi: 10.1074/jbc.274.40.28270.

Х Ву ¹ , WF Lima, ST Crooke

принадлежность

• ¹ Isis Pharmaceuticals, Inc.
  , Карлсбад, Калифорния 92082, США.

• PMID: 10497183
• DOI: 10.1074/jbc.274.40.28270

Бесплатная статья

Х. Ву и др. Дж. Биол. Хим. 1999 .

Бесплатная статья

. 1999 октября 1; 274(40):28270-8.

doi: 10.1074/jbc.274.40.28270.

Авторы

Х Ву ¹ , WF Lima, ST Crooke

принадлежность

• ¹ Isis Pharmaceuticals, Inc. , Карлсбад, Калифорния 92082, США.

• PMID: 10497183
• DOI: 10.1074/jbc.274.40.28270

Абстрактный

Мы охарактеризовали клонированную His-метку РНКазы человека h2. Активность фермента проявляла колоколообразную реакцию на двухвалентные катионы и рН. Оптимальные условия для катализа: 1 мМ Mg(2+) и рН 7-8. В присутствии Mg(2+) Mn(2+) ингибировал. Человеческая РНКаза h2 имеет много общих ферментативных свойств с РНКазой h2 Escherichia coli. Фермент человека расщепляет РНК в дуплексе ДНК-РНК с образованием продуктов с 5′-фосфатным и 3′-гидрокси-концами, может расщеплять выступающие одноцепочечные РНК, примыкающие к дуплексу ДНК-РНК, и не способен расщеплять субстраты, в которых либо Цепь РНК или ДНК имеет 2′-модификацию в месте расщепления.

Человеческая РНКаза h2 избирательно связывается с дуплексами типа «А-форма» с примерно в 10-20 раз большей аффинностью, чем наблюдаемая для РНКазы h2 E. coli. Фермент человека демонстрирует более высокую начальную скорость расщепления гетеродуплекса, содержащего РНК-фосфоротиоатную ДНК, чем дуплекса РНК-ДНК. В отличие от фермента E. coli, человеческая РНКаза h2 проявляет сильное позиционное предпочтение для расщепления, то есть она отщепляет от 8 до 12 нуклеотидов от 5′-РНК-3′-ДНК-конца дуплекса. В пределах предпочтительного сайта расщепления фермент демонстрирует умеренное предпочтение последовательности, при этом GU является предпочтительным динуклеотидом. Фермент ингибируется одноцепочечными фосфоротиоатными олигонуклеотидами и не проявляет признаков процессивности. Минимальная длина дуплекса РНК-ДНК, которая поддерживает расщепление, составляет 6 пар оснований, а минимальный «размер разрыва» РНК-ДНК, который поддерживает расщепление, составляет 5 пар оснований.

Похожие статьи

• Расщепление одноцепочечной РНК, прилегающей к участкам дуплекса РНК-ДНК, РНКазой h2 Escherichia coli.

  Лима WF, Crooke ST. Лима В.Ф. и др. Дж. Биол. Хим. 1997 г., 31 октября; 272(44):27513-6. doi: 10.1074/jbc.272.44.27513. Дж. Биол. Хим. 1997. PMID: 9346880

• Аффинность связывания и специфичность РНКазы h2 Escherichia coli: влияние на кинетику катализа гибридов антисмысловой олигонуклеотид-РНК.

  Лима WF, Crooke ST. Лима В.Ф. и др. Биохимия. 1997 14 января; 36 (2): 390-8. дои: 10.1021/bi962230p. Биохимия. 1997. PMID: 92

• Человеческая РНКаза h2 использует один триптофан и два лизина для позиционирования фермента на 3′-ДНК/5′-РНК-конце гетеродуплексного субстрата.

  Лима В.Ф., Ву Х., Николс Дж.Г., Пракаш Т.П., Равикумар В., Крук С.Т. Лима В.Ф. и др. Дж. Биол. Хим. 2003 12 декабря; 278(50):49860-7. doi: 10.1074/jbc.M306543200. Epub 2003, 23 сентября. Дж. Биол. Хим. 2003. PMID: 14506260

• Рибонуклеаза Н: ферменты эукариот.

  Черрителли С.М., Крауч Р.Дж. Черрителли С.М. и др. FEBS J. 2009 Mar; 276 (6): 1494-505. doi: 10.1111/j.1742-4658.2009.06908.x. Epub 2008, 18 февраля. ФЕБС Дж. 2009. PMID: 19228196 Бесплатная статья ЧВК. Обзор.

• РНКазы H: структура и механизм.

  Хайек М., Фигель М., Новотны М. Хайек М. и соавт. Восстановление ДНК (Amst). 2019 дек;84:102672. doi: 10.1016/j.dnarep.2019.102672. Epub 2019 20 июля. Восстановление ДНК (Amst). 2019. PMID: 31371183 Обзор.

Посмотреть все похожие статьи

Цитируется

• Выбор терапевтических антисмысловых олигонуклеотидов с нацеливанием на гены и усилением бифункциональности TLR8.

  Сапкота С., Гантье М.П. Сапкота С. и др. Методы Мол Биол. 2023;2691:225-234. doi: 10.1007/978-1-0716-3331-1_17. Методы Мол Биол. 2023. PMID: 37355549

• Панраковый анализ RNASEh2, потенциального регулятора микроокружения опухоли.

  Йи С, Ян Дж, Чжан Т, Се С, Ли В, Цинь Л, Чен Д. Йи С и др. Clin Transl Oncol. 2023 августа; 25 (8): 2569-2586. doi: 10.1007/s12094-023-03142-4. Epub 2023 6 апр. Clin Transl Oncol. 2023. PMID: 37022517

• Антисмысловой олигонуклеотид является многообещающим средством лечения заболеваний печени.

  Лу К., Фань Кью, Цзоу С. Лу К. и др. Фронт Фармакол. 2022 9 декабря;13:1061842. doi: 10.3389/fphar.2022.1061842. Электронная коллекция 2022. Фронт Фармакол.

  2022. PMID: 36569303 Бесплатная статья ЧВК. Обзор.

• Дискретное расщепление гибрида РНК-ДНК экзонуклеазой EXD2 указывает на две стадии, ограничивающие скорость.

  Цзя Х, Ли И, Ван Т, Би Л, Го Л, Чен З, Чжан Х, Е С, Чен Дж, Ян Б, Сунь Б. Цзя Х и др. EMBO J. 4 января 2023 г.; 42 (1): e111703. doi: 10.15252/embj.2022111703. Epub 2022 3 ноября. ЭМБО Дж. 2023. PMID: 36326837

• Кластеры бора как усилители активности РНКазы Н в умной стратегии подавления генов антисмысловыми олигонуклеотидами.

  Каневски Д., Кулик К., Сувара Дж., Эбенритер-Олбинска К., Наврот Б. Канёвски Д. и соавт. Int J Mol Sci. 2022 13 октября; 23 (20): 12190. дои: 10.3390/ijms232012190. Int J Mol Sci. 2022. PMID: 36293047 Бесплатная статья ЧВК.

Просмотреть все статьи «Цитируется по»

термины MeSH

вещества

Связывание гистона h2 с массивами нуклеосом зависит от длины и траектории линкерной ДНК

1. Baldi S, Korber P, Becker PB. Бусинки на струнно-нуклеосомном массиве и складчатость хроматинового волокна. Нац. Структура Мол. биол. 2020; 27: 109–118. дои: 10.1038/s41594-019-0368-х. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

2. Lai WKM, Pugh BF. Понимание динамики нуклеосом и их связи с экспрессией генов и репликацией ДНК. Нац. Преподобный Мол. Клеточная биол. 2017; 18: 548–562. doi: 10.1038/nrm.2017.47. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

3. Оруба А., Саккани С., ван Эссен Д. Роль специфического для клеточного типа позиционирования нуклеосом в индуцируемой активации промоторов млекопитающих. Нац. коммун. 2020;11:1075. doi: 10.1038/s41467-020-14950-5. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

4. Luger K, Mäder AW, Richmond RK, Sargent DF, Richmond TJ. Кристаллическая структура ядра нуклеосомы при разрешении 2,8 Å. Природа. 1997; 389: 251–260. дои: 10.1038/38444. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

5. Baldi S, Krebs S, Blum H, Becker PB. Полногеномное измерение регулярности и расстояния между локальными массивами нуклеосом с помощью секвенирования нанопор. Нац. Структура Мол. биол. 2018;25:894–901. doi: 10.1038/s41594-018-0110-0. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

6. Lai B, et al. Принципы организации нуклеосом, выявленные с помощью секвенирования нуклеаз одноклеточных микрококков. Природа. 2018; 562: 281–285. doi: 10.1038/s41586-018-0567-3. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

7. Valouev A, et al. Детерминанты организации нуклеосом в первичных клетках человека. Природа. 2011; 474: 516–520. doi: 10. 1038/nature10002. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

8. Череджи Р.В., Рамачандран С., Брайсон Т.Д., Хеникофф С. Точное полногеномное картирование одиночных нуклеосом и линкеров in vivo. Геном биол. 2018;19:19. doi: 10.1186/s13059-018-1398-0. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

9. Федоров Д.В., Чжоу Б.Р., Скоулчи А.И., Бай Ю. Новые роли линкерных гистонов в регуляции структуры и функции хроматина. Нац. Преподобный Мол. Клеточная биол. 2018;19:192–206. doi: 10.1038/nrm.2017.94. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

10. Gunjan A, Alexander BT, Sittman DB, Brown DT. Влияние гиперэкспрессии варианта гистона h2 на структуру хроматина. Дж. Биол. хим. 1999;274:37950–37956. doi: 10.1074/jbc.274.53.37950. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

11. Fan Y, et al. Истощение гистона h2 у млекопитающих изменяет глобальную структуру хроматина, но вызывает специфические изменения в регуляции генов. Клетка. 2005; 123:1199–1212. doi: 10.1016/j.cell.2005.10.028. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

12. Blank TA, Becker PB. Электростатический механизм расстояния между нуклеосомами. Дж. Мол. биол. 1995; 252:305–313. doi: 10.1006/jmbi.1995.0498. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

13. Вальдшнеп С.Л., Скоулчи А.И., Фан Ю. Роль линкерного гистона в структуре и функции хроматина: стехиометрия h2 и длина нуклеосомного повтора. Хромосомный Рез. 2006; 14:17–25. doi: 10.1007/s10577-005-1024-3. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

14. Shimada M, et al. Ген-специфическое выселение h2 через активатор транскрипции → p300 → NAP1 → путь h2. Мол. Клетка. 2019;74:268–283.e5. doi: 10.1016/j.molcel.2019.02.016. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

15. Окампо Дж., Череджи Р.В., Эрикссон П.Р., Кларк Д.Дж. ISW1 и CHD1 ATP-зависимые ремоделеры хроматина конкурируют за установку расстояния между нуклеосомами in vivo. Нуклеиновые Кислоты Res. 2016;44:4625–4635. doi: 10.1093/nar/gkw068. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

16. Ramakrishnan V, Finch JT, Graziano V, Lee PL, Sweet RM. Кристаллическая структура глобулярного домена гистона H5 и ее значение для связывания нуклеосом. Природа. 1993; 362: 219–223. дои: 10.1038/362219a0. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

17. Zhou BR, et al. Структурные механизмы узнавания нуклеосом линкерными гистонами. Мол. Клетка. 2015; 59: 628–638. doi: 10.1016/j.molcel.2015.06.025. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

18. Bednar J, et al. Структура и динамика нуклеосомы длиной 197 п.н. в комплексе с линкерным гистоном h2. Мол. Клетка. 2017;66:384–397.e8. doi: 10.1016/j.molcel.2017.04.012. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

19. Zhou BR, et al. Различные структуры и динамика хромосом с различными изоформами линкерного гистона человека. Мол. Клетка. 2021;81:166–182.e6. doi: 10.1016/j.molcel.2020.10.038. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

20. Zhou BR, Bai Y. Структуры хроматина, конденсированные линкерными гистонами. Очерки биохим. 2019;63:75–87. doi: 10.1042/EBC20180056. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

21. Chen P, Li W, Li G. Структуры и функции хроматиновых волокон. Анну. Преподобный Биофиз. 2021; 50: 95–116. doi: 10.1146/annurev-biophys-062920-063639. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

22. Dorigo B, et al. Массивы нуклеосом показывают двухзаходную организацию хроматинового волокна. Наука. 2004; 306:1571–1573. doi: 10.1126/science.1103124. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

23. Шальх Т., Дуда С., Сарджент Д.Ф., Ричмонд Т.Дж. Рентгеновская структура тетрануклеосомы и ее значение для хроматинового волокна. Природа. 2005; 436: 138–141. doi: 10.1038/nature03686. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

24. Экундайо Б., Ричмонд Т.Дж., Шальх Т. Учет структурной неоднородности волокон хроматина. Дж. Мол. биол. 2017; 429:3031–3042. doi: 10.1016/j.jmb.2017.09.002. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

25. Song F, et al. Крио-ЭМ исследование волокна хроматина выявляет двойную спираль, закрученную тетрануклеосомными звеньями. Наука. 2014; 344:376–380. doi: 10.1126/science.1251413. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

26. Garcia-Saez I, et al. Структура 6-нуклеосомного массива, связанного с h2, обнаруживает нескрученную конформацию хроматиновых волокон с двумя началами. Мол. Клетка. 2018; 72: 902–915. doi: 10.1016/j.molcel.2018.09.027. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

27. Ou, H.D. et al. ChromEMT: визуализация трехмерной структуры хроматина и уплотнения в интерфазных и митотических клетках. Наука 357 , eaag0025 (2017). [Бесплатная статья PMC] [PubMed]

28. Cai S, Böck D, Pilhofer M, Gan L. In situ структуры моно-, ди- и тринуклеосом в гетерохроматине человека. Мол. биол. Клетка. 2018;29: 2450–2457. doi: 10.1091/mbc.E18-05-0331. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

29. Ricci MA, Manzo C, García-Parajo MF, Lakadamyali M, Cosma MP. Волокна хроматина образованы гетерогенными группами нуклеосом in vivo. Клетка. 2015; 160:1145–1158. doi: 10.1016/j.cell.2015.01.054. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

30. Ohno M, et al. Субнуклеосомная структура генома обнаруживает отчетливые мотивы укладки нуклеосом. Клетка. 2019;176:520–534.e25. doi: 10.1016/j.cell.2018.12.014. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

31. Цунака Ю., Кадзимура Н., Тейт С., Морикава К. Изменение пути нуклеосомной ДНК в кристаллической структуре ядра нуклеосомы человека. Нуклеиновые Кислоты Res. 2005; 33:3424–3434. doi: 10.1093/nar/gki663. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

32. Bilokapic S, Strauss M, Halic M. Крио-ЭМ взаимодействий ядерных частиц в транс. науч. Отчет 2018; 8:7046. doi: 10.1038/s41598-018-25429-1. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

33. Кан П.Ю., Катерино Т.Л., Хейс Дж.Дж. Хвостовой домен h5 участвует во внутри- и межнуклеосомных взаимодействиях с белком и ДНК при фолдинге и олигомеризации нуклеосомных массивов. Мол. Клетка. биол. 2009; 29: 538–546. doi: 10.1128/MCB.01343-08. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

34. Kamieniarz K, et al. Двойная роль ацетилирования линкерного гистона h2.4 Lys 34 в активации транскрипции. Гены Дев. 2012; 26: 797–802. doi: 10.1101/gad.182014.111. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

35. Chu CS, et al. Опосредованное протеинкиназой А фосфорилирование серина 35 диссоциирует гистон h2.4 от митотической хромосомы. Дж. Биол. хим. 2011; 286:35843–35851. doi: 10.1074/jbc.M111.228064. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

36. Daujat S, Zeissler U, Waldmann T, Happel N, Schneider R. HP1 специфически связывается с Lys26-метилированным гистоном h2.4, тогда как одновременное фосфорилирование Ser27 блокирует связывание HP1. Дж. Биол. хим. 2005; 280:38090–38095. doi: 10.1074/jbc.C500229200. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

37. Ishihara S, et al. Локальные состояния уплотнения хроматина в местах начала транскрипции контролируют уровни транскрипции. Нуклеиновые Кислоты Res. 2021;49:8007–8023. doi: 10.1093/nar/gkab587. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

38. Risca VI, Denny SK, Straight AF, Greenleaf WJ. Вариабельная структура хроматина, выявленная in situ пространственно коррелированным картированием расщепления ДНК. Природа. 2017; 541: 237–241. doi: 10.1038/nature20781. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

39. Mauney AW, Muthurajan UM, Luger K, Pollack L. Структура(ы) раствора тринуклеосом из контрастных вариаций SAXS. Нуклеиновые Кислоты Res. 2021; 49: 5028–5037. doi: 10.1093/nar/gkab290. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

40. Ding X, Lin X, Zhang B. Стабильность и пути складывания тетрануклеосомы с шестимерной поверхности свободной энергии. Нац. коммун. 2021;12:1091. doi: 10.1038/s41467-021-21377-z. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

41. Takizawa Y, et al. Крио-ЭМ структуры центромерных тринуклеосом, содержащих центральную нуклеосому CENP-A. Состав. 2020;28:44–53.e4. doi: 10.1016/j.str.2019.10.016. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

42. Zhou BR, et al. Пересмотр восстановленных 30-нм массивов нуклеосом показывает ансамбль динамических структур. Дж. Мол. биол. 2018; 430:3093–3110. doi: 10.1016/j.jmb.2018.06.020. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

43. Журкин В.Б., Норузи Д. Топологический полиморфизм нуклеосомных волокон и укладка хроматина. Биофиз. Дж. 2021; 120: 577–585. doi: 10.1016/j.bpj.2021.01.008. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

44. Люссер А., Урвин Д.Л., Кадонага Дж.Т. Различная активность CHD1 и ACF в АТФ-зависимой сборке хроматина. Нац. Структура Мол. биол. 2005; 12: 160–166. doi: 10.1038/nsmb884. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

45. Zhou BR, et al. Крио-ЭМ структура атомного разрешения нативной нуклеосомы CENP-A с помощью фрагмента антитела. Нац. коммун. 2019;10:2301. doi: 10.1038/s41467-019-10247-4. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

46. Roulland Y, et al. Гибкие концы нуклеосомы CENP-A необходимы для митотической точности. Мол. Клетка. 2016; 63: 674–685. doi: 10.1016/j.molcel.2016.06.023. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

47. Иззо А. и др. Геномный ландшафт подтипов гистонов соматического линкера от h2.1 до h2.5 в клетках человека. Cell Rep. 2013; 3:2142–2154. doi: 10.1016/j.celrep.2013.05.003. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

48. Krishnakumar R, et al. Взаимное связывание PARP-1 и гистона h2 на промоторах определяет результаты транскрипции. Наука. 2008; 319: 819–821. doi: 10.1126/science.1149250. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

49. Krietenstein N, et al. Геномная организация нуклеосом воссоздана чистыми белками. Клетка. 2016;167:709–721.e12. doi: 10.1016/j.cell.2016.09.045. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

50. Maier VK, Chioda M, Rhodes D, Becker PB. ACF катализирует движения хромосом в хроматиновых волокнах. EMBO J. 2008; 27: 817–826. doi: 10. 1038/sj.emboj.7601902. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

51. Oberbeckmann E, et al. Элементы линейки в ремоделаторах хроматина устанавливают интервалы между массивами нуклеосом и фазировку. Нац. коммун. 2021;12:3232. doi: 10.1038/s41467-021-23015-0. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

52. Yamada K, et al. Структура и механизм фактора ремоделирования хроматина ISW1a. Природа. 2011; 472:448–453. doi: 10.1038/nature09947. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

53. Эггерс Н., Беккер П.Б. Бесклеточная геномика выявляет внутренние, кооперативные и конкурентные детерминанты взаимодействий хроматина. Нуклеиновые Кислоты Res. 2021; 49: 7602–7617. doi: 10.1093/nar/gkab558. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

54. Yang SM, Kim BJ, Norwood Toro L, Skoultchi AI. Линкерный гистон h2 способствует эпигенетическому молчанию, регулируя как метилирование ДНК, так и метилирование гистона h4. проц. Натл акад. науч. США. 2013; 110:1708–1713. doi: 10.1073/pnas.1213266110. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

55. Sun J, et al. Эпигенетическая регуляция, опосредованная гистоном h2, контролирует самообновление стволовых клеток зародышевой линии путем модулирования ацетилирования h5K16. Нац. коммун. 2015;6:8856. doi: 10.1038/ncomms9856. [Статья PMC бесплатно] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

56. Lowary PT, Widom J. Новые правила последовательности ДНК для высокоаффинного связывания с гистоновым октамером и ориентированного на последовательность позиционирования нуклеосом. Дж. Мол. биол. 1998; 276:19–42. doi: 10.1006/jmbi.1997.1494. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

57. Dodonova SO, Zhu F, Dienemann C, Taipale J, Cramer P. Структуры SOX2 и SOX11, связанные с нуклеосомами, объясняют функцию пионерного фактора. Природа. 2020; 580: 669–672. doi: 10.1038/s41586-020-2195-y. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

58. Osunsade A, et al. Надежный метод очистки и характеристики рекомбинантных вариантов человеческого гистона h2. Биохимия. 2019;58:171–176. doi: 10.1021/acs.biochem.8b01060. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

59. Lis JT, Schleif R. Фракционирование по размеру двухцепочечной ДНК путем преципитации полиэтиленгликолем. Нуклеиновые Кислоты Res. 1975; 2: 383–389. doi: 10.1093/нар/2.3.383. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

60. Luger K, Rechsteiner TJ, Richmond TJ. Получение коровой частицы нуклеосомы из рекомбинантных гистонов. Методы Энзимол. 1999; 304:3–19. doi: 10.1016/S0076-6879(99)04003-3. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

61. Мастронард Д.Н. Автоматизированная томография с помощью электронного микроскопа с надежным прогнозированием движений образца. Дж. Структура. биол. 2005; 152:36–51. doi: 10.1016/j.jsb.2005.07.007. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

62. Тегунов Д., Крамер П. Предварительная обработка данных криоэлектронной микроскопии в реальном времени с помощью Warp. Нац. Методы. 2019;16:1146–1152. doi: 10.1038/s41592-019-0580-y. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

63. Scheres SH. RELION: реализация байесовского подхода к определению структуры крио-ЭМ. Дж. Структура. биол. 2012; 180:519–530. doi: 10.1016/j.jsb.2012.09.006. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

64. Zivanov, J. et al. Новые инструменты для автоматизированного определения структуры крио-ЭМ высокого разрешения в РЭЛИОН-3. eLife 7 , e42166 (2018). [Бесплатная статья PMC] [PubMed]

65. Punjani A, Rubinstein JL, Fleet DJ, Brubaker MA. cryoSPARC: алгоритмы для быстрого неконтролируемого определения структуры крио-ЭМ. Нац. Методы. 2017;14:290–296. doi: 10.1038/nmeth.4169. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

66. Tan YZ, et al. Решение проблемы предпочтительной ориентации образца в крио-ЭМ с одной частицей за счет наклона. Нац. Методы. 2017; 14:793–796. doi: 10.1038/nmeth.4347. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

67.